D.P.R. 24/05/1988 n. 236

- 33 Ferro mg/1 Fe Spettrofotometria di assorbimento atomico

a) vetro

b) campione ben chiuso e refrigerazione a 4°C; 34 Manganese mg/1 Mn Spettrofotometria di assorbimento atomico Spettrofotometria di assorbimento molecolare

a) polietilene o vetro

b) acidificare a pH<2 (preferibilmente con HNO3 concentrato). 35 Rame mg/1 Cu Polorografia Spettrofotometria di assorbimento atomico Spettrofotometria di assorbimento molecolare

a) polietilene o vetro

b) acidificare a pH<2 (preferibilmente con HNO3 concentrato). 36 Zinco mg/1 Zn Spettrofotometria di assorbimento atomico Spettrofotometria di assorbimento molecolare

a) polietilene o vetro

b) acidificare a pH<2 (preferibilmente con HNO3 concentrato). 37 Fosforo totale mg/1 P2O5 Spettrofotometria di assorbimento molecolare

a) polietilene o vetro

b) acidificazione con H2SO4 concentrato a pH<2. 38 Fluoro mg/1 F Spettrofotometria di assorbimento molecolare previa distillazione se necessaria Metodo con elettrodi specifici

a) polietilene 39 Cobalto mg/1 Co Spettrometria di assorbimento atomico

- 40 Materie in sospensione Filtrazione su membrana o centrifugazione

- 41 Cloro residuo libero mg/1 Cl2 Spettrofotometria di assorbimento molecolare. Potenziometria

a) vetro;

b) refrigerazione a 4°C.

c) preferibilmente sul posto. 42 Bario mg/1 Ba Spettrometria di assorbimento atomico

a) polietilene o vetro

b) acidificare a pH<2 (preferibilmente con HNO3 concentrato). 43 Argento mg/1 Ag Spettrometria di assorbimento atomico

a) polietilene o vetro

b) acidificare a pH<2 44 Arsenico mg/1 As Spettrometria di assorbimento atomico Spettrofotometria di assorbimento molecolare

a) polietilene o vetro

b) acidificare a pH<2 (preferibilmente con HNO3 concentrato) 45 Berillio mg/1 Be p.m. - 46 Cadmio mg/1 Cd Spettrometria di assorbimento atomico Polarografia

a) polietilene o vetro

b) acidificare a pH<2 (preferibilmente con HNO3 47 Cianuri mg/1 CN Spettrofotometria di assora) polietilene o vetro

b) addizionare NaOH in gocce o in soluzione concentrata (pH .

12) e raffreddare 4°C 48 Cromo mg/1 Cr Spettrometria di assorbimento atomico Spettrofotometria di assorbimento molecolare

a) polietilene o vetro

b) acidificare a pH<2 (preferibilmente con HNO3 49 Mercurio mg/1 Hg Spettrometria di assorbimento atomico senza fiamma (su vapori freddi)

a) polietilene o vetro

b) per ogni litro di campione addizionare 5 ml di HNO3 concentrato e 10 ml di soluzione di KmnO4 al 5% 50 Nichel mg/1 Ni Spettrometria di assorbimento atomico

a) polietilene o vetro

b) acidificare a pH<2 (preferibilmente con HNO3 concentrato) 51 Piombo mg/1 Pb Spettrometria di assorbimento atomico Polarografia

a) polietilene o vetro

b) acidificare a pH<2 (preferibilmente con HNO3 concentrato) 52 Antimonio mg/1 Sb Spettrometria di assorbimento atomico

a) polietilene o vetro

b) acidificare a pH<2 (preferibilmente con HNO3 concentrato) 53 Selenio mg/1 Se Spettrometria di assorbia) polietilene o mento atomico vetro

b) acidificare a pH<2 (preferibilmente con HNO3 concentrato) 54 Vanadio mg/1 V p. m. - 55 Antiparassitari eprodotti assimilati µg/1 per componente separato ed in totale Cromatografia in fase gassosa oliquida previa estrazione mediante solventi adeguati e purificazione. Identicicazione dei componenti del miscuglio e determinazione quantitativa

a) vetro

b) per HCH e dieldrin acidificare con HCI concentrato (1 ml per litro di campione) e refrigerare a 4°C per parathion acidificare a pH 5 con H2SO4 (1:1)e refrigerare a 4°C. 56 Idrocarburi policiclici aromatici mg/1 Misura della fluorescenza UV previa cromatografia su strato sottile. Misura comparativa rispetto ad un miscuglio di 6 sostanze standard aventi la stessa concentrazione

a) vetro scuro ed alluminio

b) tenere al buio a 4°C. B 57 Coliformi totali per 100 ml. 58 Coliformi focali per 100 ml 59 Streptococchi fecali per 100 ml Parametri microbiologici C

A) Metodo MPN (1) Seminare almeno un matraccio con 50 ml ed una serie di 5 tubi con ml 10 di campione per ciascun tubo di brodo lattosato doppio concentrato. Incubare a 36 ± 1°C per 24 + 24 ore. I tubi positivi (presenza di gas) devono essere sottoposti a conferma in brodo-lattosiobile-verde brillante a 36 ± 1°C per 24 + 24 ore. Sulla base della positività su tale terreno (produzione di gas) riportare il valore come MPN/100 ml di campione.

B) Metodo MF Filtrare ml 100 di campione attraverso membrana filtrante. Incubare su M-Endoagar per 24 ore a 36 ± 1°C. Contare le colonie rosse. Riportare il valore a ml 100 di campione

A) metodo MPN (1). I tubi positivi di brodo lattosato di cui al parametro 57, lettera A, devono essere sottoposti a conferma in tubi di EC-Broth per 24 ore a 44,5 ± 0,2°C in bagnomaria. Sulla base della positività su tale terreno (produzione di gas) riportare il valore come MPN/100 ml di campione.

B) Metodo MF Filtrare ml 100 di campione attraverso membrana filtrante. Incubare su m-FC- Agar a 44 ± 0,2°C per 24 ore in bagnomaria. Contare le colonie bleu. Riportare il valore a ml 100 di campione.

A) Metodo MPN (1) Seminare almeno un matraccio con 50ml ed una serie di 5 tubi di Azide Dextrose Broth doppio concentrato con ml 10 di 60 Spore di clostridi solfito riduttori 61- Conteggio 62 delle colonie su Agar per 1°ml a 36°C e a 22°C campione per ciascun tubo. Incubare a 36 ± 1°C per 24 + 24 ore. I tubi positivi (torbi- D di) devono essere sottoposti a conferma in Ethyl Violetazide Broth per 24 + 24 ore a 36 ± 1°C. Leggere i tubi positivi (torbidi con deposito porpora sul fondo). Riportare il valore come MPN/100 ml di campione.

B) metodo MF Filtrare ml 100 di campione attraverso membrana filtrante. Incubare su KFStreptococcus- Agar a 36 ± 1°C per 48 ore. Leggere le colonie rosse; riportare il valore a ml 100 di campione. Distribuire il campione da esaminare in10 provettoni nella quantità di circa ml 12 per provettone. Immergere i provettoni in bagnomaria a 80°C per 10 minuti, raffreddare rapidamente sotto acqua corrente. Seminare in ragione di 10 ml per tubo in 10 tubi di terreno al solfito di sodio già predisposto. Raffreddare sotto acqua corrente ed incubare a 36 1°C per 24 + 24 ore. Contare le colonie nere di almeno mm 3 di diametro. Riportare il valore a ml 100 di campione. Seminare in Agar-germi aliquote da ml 1 dei campioni in 6 piastre di petri. Utilizzare l’Agar per il conteggio delle colonie (Plate Count Agar). Incubare 3 piastre a 36 1°C per 48 ore e 3 piastre a 22°C per 3 giorni. Contare le colonie con idoneo sistema di ingrandimento su fondo scuro. Rilevare il valore medio per ogni 3 piastre. Riportare il valore come colonie per 1 ml di campione. A B C D 1 Durezza totale Idem n. 16 Idem n. 16 2 Concentrazione di ioni idrogeno Idem n. 16 Idem n. 16 3 Alcalinità Determinazione volumetrica

a) vetro;

b) refrigerazione a 4°C.

c) 1-3 giorni 4 Ossigeno disciolto Idem n. 18 Idem n. 18 (1) Tabella per il calcolo del numero più probabile (MPN) Quantità di acqua seminata per ogni beuta e per tubo Numero più probabile/100 ml di cam- Quantità di acqua seminata per ogni beuta e per tubo Numero più probabile/100 ml di campioneNumero ml 50 ml 10 pione Numeml 50 ml 10 di tubi 0 0 0 ro di 1 0 2 positivi 0 1 1 tubi positivi 1 1 3 0 2 2 1 2 6 0 3 4 1 3 9 0 4 5 1 4 16 0 5 7 1 5 Oltre 16